DNABERT
DNABERT 是一款专为基因组 DNA 序列设计的预训练人工智能模型,它将自然语言处理领域的 BERT 架构创新性地应用于生物信息学。传统方法难以高效捕捉长序列 DNA 中复杂的上下文依赖关系,而 DNABERT 通过将 DNA 碱基序列视为一种“语言”,利用自监督学习在大规模基因组数据上进行预训练,从而深刻理解基因编码规律。
该工具主要解决了基因功能预测、启动子识别及变异效应分析等任务中特征提取困难的问题。用户只需在预训练模型基础上进行少量微调,即可在特定生物任务上获得卓越性能,大幅降低了深度学习在基因组学中的应用门槛。DNABERT 不仅提供了从预训练到微调的完整代码实现和可视化工具,还持续迭代推出了支持多物种基因组的 DNABERT-2 版本,并建立了包含 28 个数据集的综合基准测试(GUE),显著提升了模型的效率与泛化能力。
DNABERT 非常适合生物信息学研究人员、计算生物学家以及从事 AI+Bio 交叉领域开发的工程师使用。它基于成熟的 Hugging Face Transformers 框架扩展而来,支持分布式训练与混合精度加速,为探索基因组奥秘提供了强大且易用的技术底座。无论是希望深入理解基因调控机制的科学家,还是致力于开发新型药物靶点发现算法的开发者,都能从中获益。
使用场景
某生物医药公司的算法团队正在开发一种新型基因编辑疗法,急需从海量人类基因组数据中精准识别潜在的致病突变位点。
没有 DNABERT 时
- 特征工程耗时极长:研究人员需依赖传统的 k-mer 统计或手工设计序列特征,难以捕捉 DNA 序列中复杂的长距离依赖关系。
- 模型泛化能力弱:针对特定任务(如启动子预测)训练的模型,一旦换到新的物种或不同长度的序列上,准确率大幅下降,需重新收集数据训练。
- 计算资源浪费严重:每次新任务都要从头训练深度神经网络,消耗大量 GPU 算力和数天时间,导致研发迭代周期缓慢。
- 语义理解缺失:传统方法将 DNA 视为简单的字符排列,无法像理解自然语言那样捕捉碱基排列背后的生物学“语法”和上下文含义。
使用 DNABERT 后
- 直接复用预训练知识:团队直接调用在大规模基因组上预训练好的 DNABERT 模型,无需手工提取特征,模型已内嵌了丰富的 DNA 序列语义信息。
- 小样本高效微调:仅需少量标注数据对预训练模型进行微调(Fine-tuning),即可在致病位点识别任务上达到 SOTA 水平,且轻松适配不同物种。
- 研发效率显著提升:省去了漫长的预训练过程,模型部署时间从数天缩短至数小时,让团队能快速验证多种编辑策略。
- 深层模式精准捕捉:利用双向 Transformer 架构,DNABERT 能精准理解上下文中碱基的相互作用,有效识别出传统方法遗漏的隐蔽性致病突变。
DNABERT 将基因组分析从“手工锻造”带入了“预训练大模型”时代,让科研人员能以前所未有的速度和精度解读生命密码。
运行环境要求
- Linux
- 必需
- 至少一张 NVIDIA GPU,驱动版本 >= 410.48 (兼容 CUDA 10.0)
- 官方测试环境为 8 张 NVIDIA GeForce RTX 2080 Ti (每张 11GB 显存),其他规格需调整 batch size
未说明

快速开始
DNABERT
本仓库包含“DNABERT:用于基因组中DNA语言的预训练双向Transformer编码器表示模型”的实现。如果您使用了这些模型或代码,请引用我们的论文。该仓库仍在积极开发中,如遇到任何问题,请及时报告。
在本软件包中,我们提供了以下资源:DNABERT模型的源代码、使用示例、预训练模型、微调后的模型以及可视化工具。本软件包仍在开发中,未来将逐步增加更多功能。DNABERT的训练包括通用目的的预训练和特定任务的微调。作为我们项目的一部分,我们在本仓库中发布了预训练模型。我们基于HuggingFace的代码进行了扩展,并将其适配到DNA场景。
更新 2025年7月8日
原预训练DNABERT模型(DNABERT-3、4、5、6)的链接已失效。请前往HuggingFace获取并下载这些模型:
DNABERT-3:https://huggingface.co/zhihan1996/DNA_bert_3
DNABERT-4:https://huggingface.co/zhihan1996/DNA_bert_4
DNABERT-5:https://huggingface.co/zhihan1996/DNA_bert_5
DNABERT-6:https://huggingface.co/zhihan1996/DNA_bert_6
更新 2023年6月26日
第二代DNABERT,名为DNABERT-2,已在https://github.com/Zhihan1996/DNABERT_2上公开发布。DNABERT-2是在多物种基因组上训练的,相比第一代更加高效、强大且易于使用。我们在新软件包中也提供了更简单的DNABERT使用方法。同时,我们还发布了一个全面的基准测试——基因组理解评估(GUE),其中包含了7项任务下的28个数据集。如果您对我们的工作感兴趣,请查看DNABERT-2。谢谢!
引用
如果您在研究中使用了DNABERT,请引用以下文献:
@article{ji2021dnabert,
author = {Ji, Yanrong and Zhou, Zhihan and Liu, Han and Davuluri, Ramana V},
title = "{DNABERT: pre-trained Bidirectional Encoder Representations from Transformers model for DNA-language in genome}",
journal = {Bioinformatics},
volume = {37},
number = {15},
pages = {2112-2120},
year = {2021},
month = {02},
issn = {1367-4803},
doi = {10.1093/bioinformatics/btab083},
url = {https://doi.org/10.1093/bioinformatics/btab083},
eprint = {https://academic.oup.com/bioinformatics/article-pdf/37/15/2112/50578892/btab083.pdf},
}
@misc{zhou2023dnabert2,
title={DNABERT-2: Efficient Foundation Model and Benchmark For Multi-Species Genome},
author={Zhihan Zhou and Yanrong Ji and Weijian Li and Pratik Dutta and Ramana Davuluri and Han Liu},
year={2023},
eprint={2306.15006},
archivePrefix={arXiv},
primaryClass={q-bio.GN}
}
1. 环境设置
我们建议您使用Anaconda创建一个Python虚拟环境。此外,请确保您至少拥有一块配备Linux x86_64驱动程序版本≥410.48(兼容CUDA 10.0)的NVIDIA GPU。我们曾在8块具有11 GB显存的NVIDIA GeForce RTX 2080 Ti上进行分布式训练,相应的批处理大小也据此设定。如果您使用的GPU规格和显存容量不同,请相应调整您的批处理大小。
1.1 创建并激活新的虚拟环境
conda create -n dnabert python=3.6
conda activate dnabert
1.2 安装软件包及其他依赖项
(必选)
conda install pytorch torchvision cudatoolkit=10.0 -c pytorch
git clone https://github.com/jerryji1993/DNABERT
cd DNABERT
python3 -m pip install --editable .
cd examples
python3 -m pip install -r requirements.txt
(可选,安装apex以支持fp16训练)
切换到所需目录:cd PATH_NAME
git clone https://github.com/NVIDIA/apex
cd apex
pip install -v --no-cache-dir --global-option="--cpp_ext" --global-option="--cuda_ext" ./
2. 预训练(如果您直接在预训练模型上进行微调,请跳过此部分)
2.1 数据处理
请参阅位于/example/sample_data/pre的模板数据。如果您希望使用自己的数据进行DNABERT的预训练,需将数据处理成与模板相同格式。请注意,序列采用kmer格式,因此您需要先将序列转换为kmer形式。我们还在motif/motif_utils.py中提供了一个自定义函数seq2kmer用于这一转换。
以下示例以kmer=6的DNABERT为例。
2.2 模型训练
cd examples
export KMER=6
export TRAIN_FILE=sample_data/pre/6_3k.txt
export TEST_FILE=sample_data/pre/6_3k.txt
export SOURCE=DNABERT仓库路径
export OUTPUT_PATH=output$KMER
python run_pretrain.py \
--output_dir $OUTPUT_PATH \
--model_type=dna \
--tokenizer_name=dna$KMER \
--config_name=$SOURCE/src/transformers/dnabert-config/bert-config-$KMER/config.json \
--do_train \
--train_data_file=$TRAIN_FILE \
--do_eval \
--eval_data_file=$TEST_FILE \
--mlm \
--gradient_accumulation_steps 25 \
--per_gpu_train_batch_size 10 \
--per_gpu_eval_batch_size 6 \
--save_steps 500 \
--save_total_limit 20 \
--max_steps 200000 \
--evaluate_during_training \
--logging_steps 500 \
--line_by_line \
--learning_rate 4e-4 \
--block_size 512 \
--adam_epsilon 1e-6 \
--weight_decay 0.01 \
--beta1 0.9 \
--beta2 0.98 \
--mlm_probability 0.025 \
--warmup_steps 10000 \
--overwrite_output_dir \
--n_process 24
若需进行混合精度训练,可添加--fp16标签。(您需要先从源码安装‘apex’)。
3. 微调(如果您使用微调后的模型,请跳过此部分)
3.1 数据处理
请参阅 /example/sample_data/ft/ 中的模板数据。如果您希望使用自己的数据对 DNABERT 进行微调,请将您的数据处理成与模板数据相同的格式。请注意,序列采用 kmer 格式,因此您需要先将序列转换为该格式。我们还在 motif/motif_utils.py 中提供了一个自定义函数 seq2kmer 用于进行这种转换。
3.2 下载预训练的 DNABERT 模型
请将预训练模型下载到一个目录中。(如果您想复现以下示例,请下载 DNABERT 6)。然后通过运行以下命令解压文件:
unzip 6-new-12w-0.zip
我们还提供了一个 KMER=6 的微调模型,该模型在样本数据集上进行了微调,可用于预测、可视化和基序分析。如果您使用的是微调后的模型而不是自己进行微调,请下载该微调模型并将其放置在 examples/ft/6 目录下。
3.3 使用预训练模型进行微调
在下面的示例中,我们以 kmer=6 的 DNABERT 为例,并以 prom-core 这一二分类任务作为示例。
cd examples
export KMER=6
export MODEL_PATH=预训练模型路径
export DATA_PATH=sample_data/ft/$KMER
export OUTPUT_PATH=./ft/$KMER
python run_finetune.py \
--model_type dna \
--tokenizer_name=dna$KMER \
--model_name_or_path $MODEL_PATH \
--task_name dnaprom \
--do_train \
--do_eval \
--data_dir $DATA_PATH \
--max_seq_length 100 \
--per_gpu_eval_batch_size=32 \
--per_gpu_train_batch_size=32 \
--learning_rate 2e-4 \
--num_train_epochs 5.0 \
--output_dir $OUTPUT_PATH \
--evaluate_during_training \
--logging_steps 100 \
--save_steps 4000 \
--warmup_percent 0.1 \
--hidden_dropout_prob 0.1 \
--overwrite_output \
--weight_decay 0.01 \
--n_process 8
如果您希望进行混合精度训练,可以添加 --fp16 标签。(您需要先从源代码安装 apex 库)。
我们还提供了一个 KMER=6 的微调模型,该模型在样本数据集上进行了微调,可用于预测、可视化和基序分析。如果您使用的是微调后的模型而不是自己进行微调,请下载该微调模型并将其放置在 examples/ft/6 目录下。
4. 预测
模型微调完成后,我们可以通过运行以下命令进行预测:
export KMER=6
export MODEL_PATH=./ft/$KMER
export DATA_PATH=sample_data/ft/$KMER
export PREDICTION_PATH=./result/$KMER
python run_finetune.py \
--model_type dna \
--tokenizer_name=dna$KMER \
--model_name_or_path $MODEL_PATH \
--task_name dnaprom \
--do_predict \
--data_dir $DATA_PATH \
--max_seq_length 75 \
--per_gpu_pred_batch_size=128 \
--output_dir $MODEL_PATH \
--predict_dir $PREDICTION_PATH \
--n_process 48
通过上述命令,微调后的 DNABERT 模型将从 MODEL_PATH 加载,并对保存在 DATA_PATH 中的 dev.tsv 文件进行预测,预测结果将保存在 PREDICTION_PATH 中。
如果您希望进行混合精度预测,可以添加 --fp16 标签。(您需要先从源代码安装 apex 库)。
5. 可视化
DNABERT 的可视化分为两个步骤:计算注意力分数和绘图。
5.1 计算注意力分数
仅使用一个模型(例如,DNABERT6)进行计算:
export KMER=6
export MODEL_PATH=./ft/$KMER
export DATA_PATH=sample_data/ft/$KMER
export PREDICTION_PATH=./result/$KMER
python run_finetune.py \
--model_type dna \
--tokenizer_name=dna$KMER \
--model_name_or_path $MODEL_PATH \
--task_name dnaprom \
--do_visualize \
--visualize_data_dir $DATA_PATH \
--visualize_models $KMER \
--data_dir $DATA_PATH \
--max_seq_length 81 \
--per_gpu_pred_batch_size=16 \
--output_dir $MODEL_PATH \
--predict_dir $PREDICTION_PATH \
--n_process 96
通过上述命令,微调后的 DNABERT 模型将从 MODEL_PATH 加载,并对保存在 DATA_PATH 中的 dev.tsv 文件计算注意力分数,结果将保存在 PREDICTION_PATH 中。
如果您希望进行混合精度计算,可以添加 --fp16 标签。(您需要先从源代码安装 apex 库)。
5.2 绘图工具
6. 基序分析
一旦生成了注意力分数,我们可以继续使用 motif/find_motifs.py 进行基序分析:
cd ../motif
export KMER=6
export DATA_PATH=../examples/sample_data/ft/$KMER
export PREDICTION_PATH=../examples/result/$KMER
export MOTIF_PATH=./result/$KMER
python find_motifs.py \
--data_dir $DATA_PATH \
--predict_dir $PREDICTION_PATH \
--window_size 24 \
--min_len 5 \
--pval_cutoff 0.005 \
--min_n_motif 3 \
--align_all_ties \
--save_file_dir $MOTIF_PATH \
--verbose
该脚本将在 MOTIF_PATH 中为每个基序生成一个 .txt 文件和一个 WebLogo .png 文件。
7. 基因组变异分析
要进行基因组变异分析(例如SNP),我们首先需要确保已生成序列的预测结果。然后,创建一个文件(模板位于SNP/example_mut_file.txt),指定在dev.tsv中哪些序列以及需要进行突变的起始和结束位置。第一列指示dev.tsv中待突变序列的索引,第二、三列分别为起始和结束位置,第四列则指明突变的目标类型(可以是替换、插入、删除等)。
一旦创建了该文件,即可对序列进行突变:
cd ../SNP
python mutate_seqs.py ./../examples/sample_data/ft/6/dev.tsv ./examples/ --mut_file ./example_mut_file.txt --k 6
或者,也可以将--mut_file参数留空,此时程序会尝试对所有序列中的每个碱基执行四种可能的核苷酸替换(‘A’、‘T’、‘C’或‘G’)。这在绘制论文中包含的突变热图时非常有用。请注意,如果dev.tsv包含大量序列或输入序列非常长,此操作将会非常耗时,因为命令会尝试对其所有可能的位置进行突变。
cd ../SNP
python mutate_seqs.py ./../examples/sample_data/ft/6/dev.tsv ./examples/ --k 6
之后,我们可以再次对生成的序列进行预测。注意:如果你的mut_file.txt中包含插入或删除操作,请考虑调整我们在进行预测时使用的max_seq_length参数。
export KMER=6
export MODEL_PATH=../examples/ft/$KMER
export DATA_PATH=examples
export PREDICTION_PATH=examples
python ../examples/run_finetune.py \
--model_type dna \
--tokenizer_name=dna$KMER \
--model_name_or_path $MODEL_PATH \
--task_name dnaprom \
--do_predict \
--data_dir $DATA_PATH \
--max_seq_length 75 \
--per_gpu_pred_batch_size=128 \
--output_dir $MODEL_PATH \
--predict_dir $PREDICTION_PATH \
--n_process 48
这将再次在$PREDICTION_PATH下生成pred_results.npy文件。完成上述步骤后,我们可以通过以下命令计算这些突变的影响:
python SNP.py \
--orig_seq_file ../examples/sample_data/ft/6/dev.tsv \
--orig_pred_file ../examples/result/6/pred_results.npy \
--mut_seq_file examples/dev.tsv \
--mut_pred_file examples/pred_results.npy \
--save_file_dir examples
这将在save_file_dir下保存一个mutations.tsv文件,其中包含原始序列的索引(来自原始dev.tsv)、原始序列及其预测结果、突变后的序列及其预测结果,以及每种情况下的差异得分和对数似然比。
问答
1. 我无法开始训练模型/依赖项安装出现问题。
请确保您已满足DNABERT的所有系统要求,并且正确设置了conda环境。我们最近已在Amazon EC2 Deep Learning AMI(Ubuntu 18.04)上成功测试了我们的流程。作为参考,您可以将自己的系统/环境配置与该AMI进行比较。
2. DNABERT能否处理长度超过512的序列?
3. DNABERT是否可以扩展到多分类任务?
常见问题
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